熒光定量PCR檢測食品中沙門(mén)氏菌研究
2016-05-23 10:53:34 來(lái)源: 食品安全導刊
實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)(FQ-PCR)實(shí)現了PCR從定性到定量的飛躍,可對目標DNA分子起始拷貝數精確定量。因其檢測方法精確、靈敏、污染途徑少,已成為國際公認的核酸分子定量的標準方法,在食品中安全微生物的鑒定也有重要應用[1]。沙門(mén)氏菌是引起食物中毒最為常見(jiàn)的致病菌,因此,建立食品中沙門(mén)氏菌中熒光定量PCR檢測方法有重要的研究意義。材料與方法 1菌株:鼠傷寒沙門(mén)氏菌(C77-31)有中科院微生物所提供,肉類(lèi)、奶制品等產(chǎn)品均購于農產(chǎn)品市場(chǎng)。2主要試劑和設備:DNA提取試劑購買(mǎi)于美國Invitrogen公司;Taq酶和緩沖液購買(mǎi)于日本TaKara;opction2熒光定量PCR購買(mǎi)于美國MJ公司;超速離心機購買(mǎi)于Eppendorf;細菌鑒定儀;所用的常規試劑均為分析純,購買(mǎi)于國藥化學(xué)試劑有限公司;方法,將標準菌株在XLD、三糖鐵斜面和肉湯培養基上培養,從肉湯培養基中取一定量的菌液裝入EP管中,離心,去上清,加入雙蒸水,沸水浴、冰水浴,離心,取上清。食品樣品采用沙門(mén)氏菌國標檢測法(GB 4789.4-2010)中BPW前增菌之后的培養液裝入EP管中,進(jìn)行相同的操作。引物探針設計,在NCBI上搜索到目的基因,找到該基因的mRNA,在CDS選項中,找到編碼區所在位置,在下面的origin中,Copy該編碼序列作為軟件查詢(xún)序列的候選對象,然后用PrimerPremier5搜索引物和用Oligo驗證評估引物。經(jīng)過(guò)篩選進(jìn)行特異性和靈敏度的實(shí)驗。
表1 引物和探針序列
名稱(chēng) 序列 位置 Tm值(℃)
上游引物 CCCCTTTTCAATCCACAAA 450-473 57.2
下游引物 CCCCTTTTCAATCC 502-530 58.6
探針 FAM-AAACGTACCGCTGCA 66.3
實(shí)時(shí)熒光PCR反應體系與反應條件
分別考察了不同Taq酶用量,Mg2+濃度、引物濃度和探針濃度對所提取的核酸進(jìn)行擴增的影響。同時(shí)對循環(huán)條件也進(jìn)行了優(yōu)化。靈敏度實(shí)驗,將沙門(mén)氏菌按照上述的培養條件進(jìn)行培養,測量OD后估算菌數,然后稀釋、涂板確定菌密度,然后用熒光定量PCR進(jìn)行檢測。
特異性實(shí)驗,將沙門(mén)氏菌與其他的食品致病菌共同進(jìn)行特異性實(shí)驗,做陽(yáng)性對照實(shí)驗并用國標法進(jìn)行驗證。
結果與分析
反應體系的優(yōu)化 1Taq酶的優(yōu)化,考察了不同的酶量(0.5至2.5U,每個(gè)梯度為0.5)對陽(yáng)性模板的Ct值的影響,陽(yáng)性模板Ct值為23.1-23.95之間變化,其影響并不大,當酶量為2.5U時(shí),整個(gè)反應體系的熒光量最高。2Mg2+濃度的有優(yōu)化,從表2中可以看出,不同的Mg2+濃度對陽(yáng)性模板的Ct的影響并不大,當酶量為3.5U時(shí),整個(gè)反應體系的熒光量最高,因此,后續實(shí)驗也選用該濃度作為最佳濃度。
表2 Mg2+濃度對陽(yáng)性模板的Ct值的影響
1.25mmol/L 2.0mmol/L 2.75mmol/L 3.5mmol/L
Ct值 24.05 24.25 25.25 26.21
3引物探針量的優(yōu)化,分別選擇了引物濃度0.25,0.5,0.75和1.0µmol/L,探針的濃度分別為0.125,0.5,0.75和1.0µmol/L,并以不同的濃度的引物和探針濃度配比,對提取的核酸進(jìn)行PCR擴增。研究結果表明當引物濃度為0.75µmol/L,探針濃度為0.5µmol/L時(shí)熒光效率最高,因此,該濃度作為最佳條件。4循環(huán)條件的優(yōu)化,在第一輪循環(huán)前,在94℃下變性5-10min非常重要,它可使模板DNA完全解鏈。退火是PCR的一個(gè)關(guān)鍵參數。在理想狀態(tài)下,退火溫度足夠低,以保證引物同目的序列有效退火,同時(shí)還要足夠高,以減少非特異性結合。實(shí)際上,引物延伸在退火時(shí)即已開(kāi)始,因為T(mén)aqDNA聚合酶的作用溫度范圍可從20℃-85℃,延伸反應時(shí)間的長(cháng)短取決于目的序列的長(cháng)度和濃度[3]。從表4中可以看出延伸時(shí)溫度為60℃較好。
表3 循環(huán)條件的優(yōu)化
變性 退火 延伸 循環(huán)次數 Ct值
條件1 95℃,2min 95℃,5s 60℃,40s 40 26.74
條件2 95℃,2min 95℃,5s 55℃,10s 40 25.47
特異性檢測
對50份食品分別按照熒光定量PCR、國標法對沙門(mén)氏菌進(jìn)行檢測,熒光定量PCR的陽(yáng)性數為9,國標法為8,其陽(yáng)性率分別為18%和16%。雖然兩種方法的差異并不顯著(zhù),但是熒光定量PCR檢出數相對偏高,檢測時(shí)間上大大降低。這是由于熒光定量PCR使用特異性探針對定量分子進(jìn)行識別,具有很高的準確性。同時(shí),靶序列由引物和探針雙重控制,特異性好、假陽(yáng)性低。靈敏度檢測,熒光PCR檢測技術(shù)是綜合了PCR技術(shù)、熒光標記技術(shù)、激光技術(shù)、數碼顯象技術(shù)為一體的技術(shù),因此它的檢測靈敏度很高。按Ct值不大于35.0判斷為陽(yáng)性,建立的方法檢測靈敏度可達100CFU/ml。
表4 各濃度熒光定量PCR的檢測結果
106 105 104 103 102 50
Ct值 22.12 24.01 28.12 31.12 34.25 37.12
通過(guò)對熒光定量PCR的反應條件和循環(huán)體系條件進(jìn)行優(yōu)化,本研究建立的熒光定量PCR檢測方法特異性和靈敏度都較高,克服了普通PCR的缺點(diǎn),為食品中致病微生物的定量研究提供了理論和實(shí)踐的借鑒意義。

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